慢病毒载体介导的RNA干扰导致CFTR失活及在人类呼吸道上皮细胞中CRISPR-Cas9基因组编辑

作者: Jessica Bellec, Marc Bacchetta, Davide Losa, Ignacio Anegon, Marc Chanson and Tuan Huy Nguyen

卷 15, 期 5, 2015

页: [447 - 459] 页: 13

弟呕挨: 10.2174/1566523215666150812115939

价格: $65

摘要

背景:极化气道上皮细胞培养模拟囊性纤维化跨膜传导调节(CFTR)缺陷是CF和生物医学研究的关键。RNA干扰已经证明了它在产生各种病症击倒模型的价值。最近,利用CRISPR-Cas9的基因组编辑,人工内切酶编辑是基因失活的工具箱中的一个有价值的补充。方法:Calu-3细胞和原代细胞被编码有小发夹RNA(shRNA)序列的HIV-1来源的慢病毒载体(LVV)或靶向CFTR的CRISPR-Cas9组件与GFP转换。GFP阳性细胞分选后,通过RT-qPCR和Western blot测定极化或分化细胞的方法来测量CFTR基因表达。Ussing灌流室评估了CFTR通道功能。II-8的分泌,细胞的增殖和迁移也在转导细胞中有所研究。结果:shRNA干扰和CRISPRCas9策略有效地降低了在Calu-3细胞中CFTR基因的表达。强CFTR击倒模式在CRISPR-Cas9-修饰细胞功能水平中得到证实。CFTR基因特异性shRNA序列没有减少原发性细胞基因的表达,而CRISPR-Cas9-mediated基因修饰的活性与降低上皮分泌及应对CFTR抑制剂相关。CFTR在CRISPR-Cas9-modified Calu-3细胞的失活不影响迁移和增殖,但略有增加基础分泌白细胞介素-8。结论:我们产生的CFTRinactivated细胞系和显示在一个单一的LVV CRISPR-Cas9矢量化有效地促进CFTR原细胞失活。这些结果对工程师CF上皮细胞的基因控制提供了一个新的协议,这些研究在CFTR表达控制方面铺平了道路。

关键词: CFTR,CRISPR-Cas9,囊性纤维化,慢病毒载体,原发性细胞,RNA干扰。

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